Microparticules anthropiques dans la bocasse émeraude Trematomus bernacchii (Nototheniidae) de l'Antarctique

Jul 23, 2023

Rapports scientifiques volume 12, Numéro d'article : 17214 (2022) Citer cet article

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Des microparticules anthropiques (MA) ont été trouvées pour la première fois dans des spécimens de Trematomus bernacchii collectés en 1998 dans la mer de Ross (Antarctique) et stockés dans la Banque de spécimens environnementaux de l'Antarctique. La plupart des MA identifiés étaient des fibres d'origine naturelle et synthétique. Les AM naturels étaient cellulosiques, les synthétiques étaient en polyester, polypropylène, polypropylène/polyester et acétate de cellulose. La présence de colorants dans les AM naturels indique leur origine anthropique. Cinq colorants industriels ont été identifiés par spectroscopie Raman avec l'Indigo présent dans la plupart d'entre eux (55%). Notre recherche ajoute non seulement des données supplémentaires à la connaissance actuelle des niveaux de pollution dans l'écosystème de l'Antarctique, mais fournit un instantané intéressant du passé, soulignant que les microplastiques et la pollution par les fibres anthropiques étaient déjà entrés dans le réseau trophique marin de l'Antarctique à la fin des années 90. Ces résultats établissent donc les bases pour comprendre l'évolution de la pollution par les déchets marins au fil du temps.

Au cours du dernier demi-siècle, l'un des changements les plus omniprésents et les plus durables à la surface des océans de notre planète est l'accumulation et la fragmentation du plastique1. Les microplastiques (MP) sont des particules de plastique inférieures à 5 mm, fabriquées sous forme de petites particules ou issues de la fragmentation d'objets en plastique plus gros2. La pollution par les PM est répandue dans le monde entier et dans les écosystèmes océaniques mondiaux, des tropiques aux pôles, y compris l'océan Austral3,4. Malgré leur présence omniprésente, il existe relativement peu de signalements de MP dans les régions polaires et particulièrement dans l'océan Austral5.

Le continent antarctique et les eaux environnantes sont affectés par l'activité humaine depuis environ deux siècles6. Dans la plupart des régions du continent, les effets des activités scientifiques, de la pêche et du tourisme ont entraîné différents types de pollution, y compris la pollution plastique7. De plus, les habitats terrestres et marins adjacents aux bases scientifiques antarctiques actuelles ou abandonnées sont affectés par une contamination localisée8.

Les rapports les plus anciens sur la présence de déchets plastiques dans les eaux et les oiseaux de l'Antarctique remontent aux années 809,10. Les premiers enregistrements d'ingestion de MP par les oiseaux de mer provenaient de l'océan Austral, lorsque les prions Pachyptila spp. contenaient du plastique en 196011. Des études ultérieures menées après vingt ans sur la banquise (2009) ont mis en évidence la présence de 14 polymères différents, principalement du polyéthylène (PE), du polypropylène (PP) et du polyamide (PA)12 (tableau 1). Certaines études, menées entre 2010 et 2017, ont signalé la présence de polymères plastiques également dans l'eau de mer et les sédiments, comme résumé dans le tableau 1.

Des études récentes ont montré que le krill antarctique peut effectuer une fragmentation biologique des microsphères de polystyrène (PS) en nanoplastiques (NPs, < 1 µm)13,14 et cela peut être lié à la propagation des MPs et des NPs dans les écosystèmes marins et à la répercussion potentielle sur les chaînes alimentaires antarctiques15.

Les bivalves et les gastéropodes présentaient la plus forte contamination en PM parmi les invertébrés benthiques antarctiques, comparable aux valeurs rapportées pour d'autres zones moins éloignées16. L'ingestion de PM a également été mise en évidence chez les amphipodes pélagiques vivant dans les eaux de surface de l'Antarctique17 (tableau 2).

Des articles récents ont signalé la présence de MP (PE, PP, PA, polytétrafluoroéthylène (PFTE), polyacrylonitrile (PAN) et nylon) dans les excréments de diverses espèces de manchots, notamment Pygoscelis papua, P. adeliae, P. antarcticus et Aptenodytes patagonicus18,19,20.

La zone au sud de la latitude 60 S est régie par le Système du Traité sur l'Antarctique (ATS) et, pour les questions environnementales, par le Protocole sur la protection de l'environnement au Traité sur l'Antarctique, entré en vigueur en 1991. Ce protocole contient des annexes spécifiques sur l'élimination et la gestion des déchets (Annexe III) et sur la Prévention de la pollution marine (Annexe IV). De plus, la zone antarctique est considérée comme une "zone spéciale", et dans le cadre de la convention IMO-MARPOL pour la prévention de la pollution par les navires21 ; selon l'annexe V, le rejet délibéré de déchets plastiques par les navires (tels que les cordes en plastique, les filets de pêche et les sacs en plastique) et d'autres déchets est interdit. En raison des preuves croissantes de pollution plastique en Antarctique, le Comité scientifique pour la recherche antarctique (SCAR) a récemment créé un groupe d'action sur la pollution plastique dans l'océan Austral22 et, en 2019, le système du Traité sur l'Antarctique a adopté la résolution "Réduire la pollution plastique en Antarctique et dans l'océan Austral". Ce document recommande d'éliminer les produits de soins personnels en plastique, d'identifier et d'échanger des informations afin de réduire les rejets de MP provenant des systèmes d'eaux usées, de soutenir la surveillance de la pollution plastique en Antarctique et, enfin, d'insérer la question des MP dans les annexes III et IV du Protocole sur la protection de l'environnement du Traité sur l'Antarctique.

Malgré les efforts importants pour surveiller et évaluer les niveaux de pollution plastique autour de l'Antarctique, l'étendue, la quantité et les impacts des PM dans l'environnement marin de cette zone spéciale restent largement inconnus. Les études sur l'état de la pollution marine du continent antarctique à l'aube de ce phénomène sont rares et il serait donc crucial de faire la lumière sur son origine et son évolution au fil des décennies. Très récemment, une étude sur la neige antarctique a révélé la présence d'une pollution aux microplastiques liée aux travaux des chercheurs de la Station Antarctique Mc Murdo23.

La bocasse émeraude Trematomus bernacchii (Boulenger, 1902), également connue sous le nom de notothen émeraude, est une espèce de poisson marin appartenant à la famille des Nototheniidae, et c'est un téléostéen très commun dans les eaux peu profondes de la zone du Haut-Antarctique24. Il est originaire de l'océan Austral où il s'agit d'une espèce commercialement importante25. T. bernacchii vit dans des eaux très peu profondes jusqu'à 700 m de profondeur et il est adapté pour vivre à des températures extrêmement basses. Il s'agit d'un nourrisseur généralisé avec une large niche composée presque exclusivement d'organismes benthiques (principalement des polychètes infauniques et épifauniques, des amphipodes et des mollusques) et de petits poissons. T. bernacchii peut être considéré comme un mangeur opportuniste car il modifie ses habitudes alimentaires habituelles pour exploiter différentes ressources alimentaires saisonnièrement abondantes (zooplancton)26. Les notothénioïdes, comme T. bernacchii, jouent un rôle clé dans le réseau trophique du Haut-Antarctique de la mer de Ross, représentant le lien entre les niveaux trophiques supérieur et inférieur contribuant à la dynamique et à la stabilité du système marin27.

Dans ce travail, la présence et la composition de microparticules anthropiques (ci-après AM) dans la bocasse émeraude ont été étudiées, dans le but d'évaluer si ce type de pollution existait déjà il y a plusieurs décennies. Cela a été possible parce que des spécimens de T. bernacchii ont été systématiquement collectés depuis la fin des années 90 dans le cadre des activités de la Banque de spécimens environnementaux de l'Antarctique28 (BCAA) et du Musée national de l'Antarctique italien (MNA), puis correctement stockés pour préserver leur intégrité. Ainsi, des spécimens de T. bernacchii collectés dans l'environnement côtier antarctique de la baie de Terra Nova (mer de Ross, Antarctique) en 1998 (les plus anciens échantillons disponibles stockés dans les BCAA) ont fourni un instantané intéressant de la pollution par les PM à cette époque. Dans cette étude, la spectroscopie micro-Raman a été utilisée pour identifier la composition chimique des microparticules car elle fait partie des techniques les plus puissantes pour détecter et identifier les microparticules marines et les additifs chimiques anthropiques associés, ainsi que pour différencier les particules naturelles et synthétiques29,30,31.

L'étude a porté sur huit spécimens adultes de T. bernacchii ; la longueur variait de 215 à 275 mm et le poids de 165 à 319 g (tableau 3). Six échantillons étaient positifs pour les AM (75 %), un total de 37 particules (gamme de taille 0,4–4,2 mm) ont été détectées dans les GIT, appartenant principalement à de grands AM (63 % ; gamme de taille 1,1–4,2 mm) et petits AM (37 % ; gamme de taille 0,4–0,9 mm).

Parmi eux, 35 (95%) étaient des fibres et 2 (5%) étaient des fragments. Aucune pastille, mousse ou sphère de plastique n'a été trouvée. Les particules bleues étaient les plus abondantes (32 %), suivies des particules blanches/transparentes (27 %), noires (24 %), rouges (8 %), vertes (3 %), violettes (3 %) et jaunes (3 %) (Fig. 1).

Ensemble sélectionné de microparticules anthropiques (MA) isolées du tractus gastro-intestinal (GIT) d'échantillons de Trematomus bernacchii capturés en 1998 en Antarctique (baie de Terra Nova, mer de Ross) et fournis par la Banque de spécimens environnementaux de l'Antarctique. Des MA ont été identifiés en analysant les spectres mesurés au moyen de la spectroscopie micro-Raman (panneaux A.1, B.1, C.1, D.1), après acquisition d'image avec un stéréomicroscope optique (4x, Leica M205C ; panneaux A.2, B.2, C.2, D.2, rapport d'échelle pour le panneau B.2 et D.2 comme dans le panneau A.2) et une microscopie confocale Raman (50\(\times\), Olympus BX4 1 panneaux (A.3, B.3, C.3, D.3), rapport d'échelle pour tous les panneaux indiqués dans le panneau (A.3). Le grossissement 50 × permet d'apprécier : la fibre à tige rigide de polyester (B.3) ; la texture du tissu de coton (C.3) ; les rubans plats et légèrement torsadés de fibres cellulosiques (D.3). ingéré par Trematomus bernacchii.

Les microparticules identifiées (n = 20 ; 57 %) étaient d'origine naturelle et synthétique, sur la base des MA identifiés, la valeur d'abondance était égale à 3,3 éléments/échantillon ; tandis que quinze microparticules n'ont pas été identifiées car la fluorescence a éclipsé leur signal Raman.

La découverte d'AM dans les GIT de T. bernacchii peut être liée à ses habitudes alimentaires et à sa forte relation avec le fond marin, comme également suggéré pour d'autres poissons benthiques32,33,34. Plusieurs études en mer Méditerranée ont trouvé des fibres non plastiques, principalement à base de cellulose, chez différentes espèces benthivores35,36. Les AM peuvent être accidentellement ingérés pendant l'activité d'alimentation ou par ingestion secondaire. T. bernacchii est un prédateur généralisé37 avec un large éventail d'aliments26 et il peut également être considéré comme un prédateur opportuniste, entreprenant des migrations verticales occasionnelles pour se nourrir de proies planctoniques abondantes localement et saisonnièrement26. À la lumière de cela, T. bernacchii peut également ingérer les MA le long de la colonne d'eau.

Étant donné que cette étude est la première enquête menée sur des espèces de poissons antarctiques, nous n'avons pu faire que des comparaisons avec des études récentes sur l'eau de mer, les sédiments et les organismes benthiques de la même zone d'étude.

Les microfibres étaient les microparticules les plus fréquentes dans les sédiments proches de la station italienne "Mario Zucchelli" (MZS)38 et dans les eaux proches de la station d'épuration de MZS39, ainsi que chez les manchots d'autres zones antarctiques18,20.

Les poissons peuvent constituer une source indirecte de contamination des microfibres pour les prédateurs marins comme pour les phoques40 et les manchots des zones subantarctiques19 (21,9 éléments/g d'excréments).

Les microparticules d'origine naturelle identifiées étaient cellulosiques (n=14 ; 70%). L'un des fragments montrait la texture typique du tissu (voir Fig. 1, panneau C.3). Le coton était l'article le plus abondant (45 %) suivi de la cellulose (18 %). La plupart des microfibres cellulosiques se sont révélées teintées, confirmant ainsi leur origine manufacturée (anthropique).

Parmi toutes les microfibres examinées, le colorant industriel a été identifié par spectroscopie Raman dans 11 articles : Indigo, Cromophtal Violet B, Drimaren Navy Bue R-2RL, Vine black dye et Sirius light green, l'Indigo étant présent dans la plupart d'entre eux (55 %). Les spectres Raman des éléments identifiés sélectionnés sont illustrés à la Fig. 1.

Conformément à nos résultats, la plupart des fibres (~ 88%) trouvées dans les excréments de manchots royaux de Géorgie du Sud étaient constituées de matériaux cellulosiques naturels (coton, lin), avec seulement quelques fibres synthétiques19 (PES, PP et acrylique).

Les textiles sont la principale source environnementale de microfibres41,42. Les textiles synthétiques sont responsables du rejet d'environ 0,5 million de tonnes de PM dans la mer chaque année43.

Les fibres de cellulose artificielles associées à des colorants ou des additifs pourraient être potentiellement nocives pour les organismes marins35,44,45, en effet les colorants industriels sont utilisés dans l'industrie avec plusieurs polymères tels que les fibres de cellulose. En particulier, l'indigo est utilisé pour teindre les fibres cellulosiques du jean bleu, le vêtement le plus populaire au monde46. La présence de microfibres teintées à l'indigo a été récemment documentée dans les écosystèmes marins47. Les microfibres « blue jeans » ont été proposées comme un indicateur du fardeau généralisé de la pollution anthropique des régions tempérées aux régions arctiques48. De plus, les colorants textiles, sont très toxiques et sont liés à la dégradation de l'environnement49.

Les colorants textiles peuvent compromettre la qualité esthétique des masses d'eau, augmenter la demande biochimique et chimique en oxygène (DBO et DCO), altérer la photosynthèse et réduire la croissance des plantes43. Les colorants textiles peuvent entrer dans la chaîne alimentaire43, se bioaccumuler, se bioamplifier50, favoriser la toxicité, la mutagénicité et la cancérogénicité 51,52,53,54.

Dans leur très récente étude sur 202255, Athey et Erdle ont suggéré que l'abondance de microfibres naturelles et semi-synthétiques dans le biote marin pourrait être sous-estimée55. Ils énumèrent différentes causes possibles de cette sous-évaluation, les méthodes utilisées pour isoler les microfibres sont conçues pour la récupération et l'identification des matériaux synthétiques. Certains produits chimiques, utilisés pour isoler les microfibres synthétiques, peuvent provoquer la dégradation des fibres non synthétiques ; plusieurs études excluent les microparticules naturelles et semi-synthétiques de leurs analyses4 en partant du principe que les fibres non plastiques sont facilement biodégradables ou non dangereuses pour le biote marin56. Athey et Erdle soulignent également que, bien que les fibres naturelles puissent se dégrader plus rapidement que les polymères synthétiques, ces fibres peuvent persister dans le milieu marin pendant des décennies en fonction de la nature de la fibre et des facteurs environnementaux55. De plus, la dégradation des fibres naturelles et semi-synthétiques implique la libération de toxiques adsorbés à la surface dans l'environnement56. Les colorants textiles industriels peuvent également prolonger la persistance des microfibres dans l'environnement55. Nous suggérons qu'une plus grande attention soit accordée à la détection expérimentale des colorants dans les fibres naturelles, car les colorants sont des indicateurs de traitement anthropique et des causes potentielles de dommages biologiques. L'effet des microfibres naturelles et semi-synthétiques sur le biote marin est sous-étudié et mérite une attention particulière, notamment de la part de la communauté de recherche polaire.

Les microparticules synthétiques rapportées dans cette étude étaient le polyester (PES ; 3), le polypropylène (PP ; 1), le polypropylène/polyester (1) et l'acétate de cellulose (1) (Fig. 1).

Le PES et le PP étaient également les principaux polymères trouvés dans l'eau de mer à côté de la station d'épuration de MZS39. Le PP a également été trouvé dans les sédiments de la mer de Ross38, ainsi que dans l'eau de mer, les sédiments et la glace de mer d'autres zones antarctiques (tableau 1). Conformément à nos données, l'un des polymères les plus courants chez les manchots de la région de la péninsule antarctique et de la mer de Scotia était le PP20 (tableau 2). Les poissons peuvent agir comme source indirecte de contamination microplastique lorsqu'ils sont la proie d'autres organismes. Les principaux risques sont liés non seulement à la propagation des MP le long de la chaîne alimentaire qui atteint l'homme, mais surtout à la libération de xénobiotiques dangereux adhérant aux MP57.

Actuellement 76 stations de recherche scientifique sont situées en dessous de 60° S appartenant à 29 nations ; 31% sont des stations permanentes alors que 69% des stations ne sont actives qu'en été.

Les stations d'épuration ne sont présentes que dans la moitié des stations de recherche (48%). C'est le cas du MZS qui est ouvert de mi-octobre à mi-février. Cependant, le traitement conventionnel des eaux usées, y compris les techniques de traitement tertiaire, peut éliminer environ 90 % des PM58, et cette situation peut être exacerbée dans les régions éloignées où les difficultés opérationnelles peuvent réduire l'efficacité du traitement59. Les PM non retenus peuvent être rejetés dans un état largement inaltéré, dans le milieu marin côtier après avoir transité par des installations. De la même manière, les colorants textiles ne sont pas facilement éliminés par les procédés conventionnels de traitement des eaux usées en raison de leurs propriétés intrinsèques60 (c'est-à-dire la stabilité et la résistance à la lumière ou aux agents oxydants). Sur la base d'une étude très récente sur la neige tombée en Antarctique, la contamination par les microplastiques et les fibres anthropiques peut être liée aux stations de recherche antarctiques et provenir des vêtements et équipements polaires23.

Cet article fournit un instantané du passé sur l'ingestion d'AM par des spécimens de bocasse émeraude collectés il y a 24 ans, représentant la première preuve de ce phénomène chez un poisson antarctique.

De plus, cette découverte sera utile pour comparer le niveau de pollution passé avec la situation actuelle, en analysant le tractus gastro-intestinal de Trematomus bernacchii capturé lors de la dernière campagne antarctique (expédition XXXVII – 2021/2022). Cette comparaison permettra de comprendre l'évolution de la pollution par les déchets marins au fil du temps, en particulier dans l'écosystème antarctique, avec ses caractéristiques environnementales particulières et sa fragilité, digne d'être protégée et préservée.

Cette étude souligne en outre l'importance de la surveillance des microparticules anthropiques et des colorants textiles en Antarctique et, espérons-le, aidera les mesures politiques actuelles sur la pollution plastique dans le cadre du Traité sur l'Antarctique à améliorer la surveillance et à promouvoir les mesures d'atténuation. A l'avenir, un réseau de connexion permettant de récupérer des échantillons plus anciens dans le suivi de l'évolution de la pollution dans le temps est fortement souhaitable.

La zone d'étude était située à Gerlache Inlet (74° 41′ S; 164° 6′ E), un bras de mer de 7 km de large dans le coin nord-ouest de la baie de Terra Nova (mer de Ross), une zone marine côtière de 29,4 km2 entre le cap Washington et la langue de glace Drygalski (Fig. 2).

Zone d'étude (baie de Terranova, mer de Ross). La carte a été créée à l'aide de Google Earth (https://earth.google.com/web/@74.6953791,164.0961781,0.4171455a,2467.23579724d,30.00002056y,0h,0t,0r) sur laquelle les sites d'échantillonnage et les rejets de la station d'épuration ont été indiqués.

Ce site est une zone littorale importante pour les recherches scientifiques à long terme, et il a été proposé comme zone spécialement protégée de l'Antarctique (ZSPA) par l'Italie en 2003. Des échantillonnages ont été effectués en février 1998 sur deux sites : B5 (74° 41′ 60′′ S, 164° 07′ 00′′ E) et B806 (74° 43′ 02 5'' S, 164° 08' 648'' E). B5 et B806 sont respectivement à 3,8 et 7 km de l'exutoire des eaux usées (Fig. 2). Les spécimens ont été capturés au trémail, immédiatement congelés, envoyés en Italie à la fin de l'expédition, et finalement stockés à la Banque de spécimens environnementaux de l'Antarctique. Les échantillons ont été conservés à -20 °C du prélèvement à l'analyse, réalisée en juin 2021.

Chaque spécimen a été lentement décongelé à 4 ° C pendant la nuit, puis les GIT, de l'œsophage à l'extrémité de l'intestin, ont été retirés et stockés dans une boîte de Pétri en verre. Chaque GIT, a été pesé et sous une hotte microbiologique, placé dans un flacon en verre conique et traité avec une solution de K-OH à 10 %, dans un rapport de 1 : 5 (p/v). Le ballon a été agité à 50°C pendant 48 h. Ensuite, chaque échantillon a été placé dans un cylindre en verre en ajoutant une solution hypersaline de NaCl à 15% pour obtenir une séparation de densité des deux phases. Le surnageant a été recueilli dans un bécher en verre et filtré à travers des filtres en fibre de verre (1,6 μm Whatman GF/F, UK) à l'aide d'un système de vide (Millipore). Après les procédures de filtration, les membranes ont été placées dans des boîtes en verre de Pétri stériles pour des observations ultérieures au stéréomicroscope (Leica M205C) afin d'isoler les débris de plastique61. Toutes les particules ont été identifiées visuellement, comptées, mesurées et photographiées. Tous les articles ont été classés en fonction de leur taille (petite microparticule : 0,1 à 1 mm ; grosse microparticule : 1 à 5 mm ; méso : 5 à 25 mm ; macro : > 25 mm), forme (pastille, fibre, mousse, fragment, feuille et sphère) et couleur selon le protocole de la directive-cadre sur la stratégie pour le milieu marin62.

Les éléments anthropiques trouvés dans les GIT ont été exprimés en nombre d'AM identifiés par spécimen. Tous les éléments isolés de chaque spécimen de poisson ont été analysés pour la caractérisation.

Pour éviter toute contamination aéroportée lors des analyses en laboratoire, les espaces de travail et les outils ont été rigoureusement nettoyés de toute contamination particulaire, suivant le protocole suivant63, les échantillons ont été traités dans une salle à accès restreint, pour éviter toute contamination externe accidentelle, et toutes les opérations ont été réalisées sous hotte microbiologique. Tous les matériaux utilisés pour la dissection, les étapes d'extraction et d'analyse ont été soigneusement nettoyés avec de l'éthanol et de l'eau déminéralisée filtrée. De la verrerie a été utilisée et tous les instruments et équipements (y compris les pincettes et les ciseaux) ont été rincés abondamment avec de l'eau ultra pure. De plus, les opérateurs portaient des manteaux de coton. Les béchers ont été recouverts d'une feuille d'aluminium entre chaque étape pour éviter la contamination aéroportée. Des blancs de procédure ont également été exécutés simultanément pour éviter une surestimation des fibres, des filtres humides dans des boîtes de Pétri ont été placés sous la hotte microbiologique et exposés à l'air du laboratoire près du stéréomicroscope64. Des blancs de procédure sans tissu ont également été analysés en même temps que les échantillons. Un blanc procédural tous les deux échantillons a été réalisé. Les échantillons blancs procéduraux étaient exempts de toute contamination AM.

Toutes les particules isolées des GIT ont été évaluées par micro-spectroscopie Raman. Une analyse préliminaire des résultats Raman visait à identifier et regrouper les spectres similaires. Par la suite, l'identification moléculaire du composant des MA a été réalisée en comparant les spectres Raman avec ceux disponibles dans les bibliothèques.

La spectroscopie Micro-Raman a été utilisée pour identifier les compositions polymères des AM. Les fibres présentant des ramifications ou une épaisseur modifiée sur leur longueur ont été rejetées, les deux caractéristiques étant la preuve d'une origine biologique (racine ou fibres végétales).

Les spectres Raman de microfibres et de particules ont été pris dans une géométrie de rétrodiffusion sur un système Raman micro confocal HR Evolution (Horiba Scientific) en utilisant un laser à diode électroluminescente verte (λ = 532 nm), un × 100 (NA = 0,90) ou un objectif × 50 (NA = 0,45), un réseau de 1800 g / mm et un détecteur à dispositif à couple chargé refroidi à 77 K. Pour éviter la photodégradation de l'échantillon, la puissance du laser a été maintenue en dessous de 5 mW en utilisant un filtre de transmission à faible pourcentage. Les spectres ont été collectés dans la plage de 200 à 4 000 cm-1, tandis que la durée de l'exposition au laser et le nombre d'accumulations de spectres variaient dans la plage de 5 à 20 s et de 2 à 20, respectivement, en fonction du colorant spécifique dans le MP. L'analyse a été effectuée à différents points sur le même MP pour confirmer l'identification. Pour éliminer les interférences de fond dues à la fluorescence, les données des échantillons fluorescents ont été corrigées par la routine de correction plate du LabSpec6. De plus, outre la correction FLAT, une correction de base a été appliquée avant l'analyse spectrale. Les spectres ont été identifiés en les comparant à ceux de matériaux standard catalogués dans les bases de données spectrales de la bibliothèque spectrale Bio-Rad KnowItAll et de la bibliothèque spectrale de particules plastiques (SLoPP et SLoPP-E). Une valeur de l'indice de qualité des résultats (HQI) de 80 % ou plus a été acceptée comme de véritables mathématiques.

Les auteurs déclarent avoir obtenu l'autorisation d'utiliser des échantillons de poissons antarctiques à des fins de recherche auprès du Musée national italien de l'Antarctique (MNA) et de la Banque d'échantillons environnementaux de l'Antarctique (BCAA) de Gênes.

Les ensembles de données utilisés et/ou analysés au cours de l'étude en cours sont disponibles auprès de l'auteur correspondant sur demande raisonnable.

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Les auteurs tiennent à remercier le Musée national de l'Antarctique italien (MNA) et la Banque de spécimens environnementaux de l'Antarctique (BCAA) de Gênes (Italie) pour avoir aimablement fourni des spécimens de Trematomus bernacchii utilisés dans cette étude.

Institut des ressources biologiques marines et de la biotechnologie (IRBIM) - CNR, Messine, Italie

Teresa Bottari, Serena Savoca, Nunziacarla Spanò & Monique Mancuso

Département d'écologie marine intégrative (EMI), Stazione Zoologica Anton Dohrn - Institut national de biologie, d'écologie et de biotechnologie marine, Centre marin de Sicile, Messine, Italie

Teresa Bottari, Teresa Roméo et Monique Mancuso

Département des sciences mathématiques et informatiques, des sciences physiques et des sciences de la Terre, Université de Messine, Messine, Italie

Valeria Conti Nibali, Caterina Branca et Giovanna D'Angelo

Département de chimie et chimie industrielle (DCCI), Université de Gênes, Gênes, Italie

Marco Grotti

Département d'imagerie biomédicale, dentaire et morphologique et fonctionnelle, Université de Messine, Messine, Italie

Serena Savoca & Nunziacarla Spanò

Institut pour la protection et la recherche environnementales (ISPRA), Milazzo, ME, Italie

Thérèse Roméo

Institut des sciences polaires (ISP) – CNR, Messine, Italie

Maurice Azaro

Département des infrastructures de recherche pour les ressources biologiques marines (RIMAR), Stazione Zoologica Anton Dohrn, Institut national de biologie, d'écologie et de biotechnologie marine, Centre de recherche calabraise et infrastructures marines avancées (CRIMAC), Amendolara, CS, Italie

Sylvestre le Grec

Institut des processus chimiques et physiques, Conseil national italien de la recherche (IPCF-CNR), Messine, Italie

Joanna D'Angelo

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Le CT a contribué en écrivant l'ébauche originale, en l'examinant et en supervisant. VCN a contribué en effectuant l'analyse formelle, la conservation des données et la rédaction. CB, MG, SS, TR, NS, MA et SG ont contribué à la révision et à l'édition. GD a contribué à faire l'analyse formelle, la conservation des données et de l'écriture, la supervision. MM contribué par l'administration du projet, la conceptualisation, l'analyse formelle, la rédaction et la supervision. Tous les auteurs ont approuvé la publication du contenu et ont contribué à la rédaction du travail et à la révision critique du manuscrit.

Correspondance à Giovanna D'Angelo ou Monique Mancuso.

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.

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Réimpressions et autorisations

Bottari, T., Nibali, VC, Branca, C. et al. Microparticules anthropiques chez la bocasse émeraude Trematomus bernacchii (Nototheniidae) de l'Antarctique. Sci Rep 12, 17214 (2022). https://doi.org/10.1038/s41598-022-21670-x

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Reçu : 04 juillet 2022

Accepté : 29 septembre 2022

Publié: 14 octobre 2022

DOI : https://doi.org/10.1038/s41598-022-21670-x

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